现货型CAR-T疗法的危机：Cas9基因编辑后，T细胞繁现染色体异常
来源:生物世界
2017年，美国 FDA 批准了首款 CAR-T 细胞疗法上市，人类进入细胞治疗时代，CAR-T 细胞疗法在血液类癌症中取得了很好的临床效果。目前，已上市的几款 CAR-T 疗法都是使用的来自癌症患者自身的自体 T 细胞，自体细胞疗法的优势在于能够在患者体内长时间发挥作用，且不产生排异反应，但该方法也存在着许多局限性，自体细胞疗法耗时长，一些急性白血病患者没有足够时间等待，此外，许多病情严重的患者没有足够的 T 细胞用于工程化改造，也没有足够的时间来等待改造。因此，许多研究团队和公司开始致力于开发同种异体细胞疗法，异体细胞疗法的细胞来源更多样，可以是外周血、脐带血，以及人工诱导多能干细胞（iPSC）等等，该方法更容易批量生产，耗时更少，能够解决自体细胞疗法的多种局限，也就是所谓的“现货型”细胞疗法。以现货型 CAR-T 疗法为代表的同种异体 T 细胞疗法，通常使用基因编辑技术（主要是 CRISPR-Cas9）来敲除 T 细胞受体（TCR）及其他基因，来避免移植后出现的移植物抗宿主病（GvHD）。
2022年6月30日，以色列特拉维夫大学的研究人员在 Nature 子刊 Nature Biotechnology 发表了题为：Frequent aneuploidy in primary human T cells after CRISPR–Cas9 cleavage 的研究论文。该研究使用单细胞 RNA 测序技术验证了 CRISPR-Cas9 基因编辑人类原代 T 细胞后的结果，检测结果显示，CRISPR-Cas9 编辑的目标基因所在的染色体出现了频繁的染色体非整倍性（染色体数目的增加或减少）和染色体截短。这项研究结果表明，染色体的非整倍性和截短是 CRISPR-Cas9 切割 DNA 双链后的常见结果，因此，在使用 CRISPR-Cas9 基因编辑的临床试验中，尤其是基于 CRISPR-Cas9 的细胞疗法开发中，应当特别注意监测和尽量降低这种潜在的严重染色体变异。
2020年2月，CAR-T 之父 Carl June 教授等人在 Science 期刊发表论文，报道了首个基于基因编辑的 CAR-T 疗法治疗癌症的人体临床试验结果。该研究通过 CRISPR-Cas9 基因编辑敲除了 T 细胞上的 TCR 和 PD-1，TCR 蛋白的 α 链（TCRα）由 TRAC 基因表达，该基因位于14号染色体；TCR 蛋白的 β 链（TCRβ）由 TRBC 基因表达，该基因位于7号染色体；PD-1蛋白由 PDCD1 基因表达，该基因位于2号染色体。在这篇最新论文中，研究团队使用 CRISPR-Cas9 基因编辑技术来敲除人原代 T 细胞的表达 TCR 和 PD-1 的基因，而且使用了和上述 Science 论文中同样的 gRNA 来靶向敲除 TCR 和 PD-1。然后使用单细胞 RNA 测序来研究编辑后的人原代 T 细胞的结果。实验结果显示，在基因编辑4天后，相当比例的原代 T 细胞出现了染色体异常。具体来说，9%的原代 T 细胞出现了14号染色体缺失，1.4%的原代 T 细胞出现了14号染色体增加，表达 TCRα 的基因位于14号染色体。9.9%的原代 T 细胞出现了7号染色体截断，表达 TCRβ 的基因位于7号染色体。而在编辑的第11天后，仍有0.9%的原代 T 细胞存在14号染色体缺失，进一步证实了这种染色体变异的长期存在。
这项研究表明，染色体非整倍性（染色体数目的增加或减少）和染色体截断，是 CRISPR-Cas9 基因编辑时对 DNA 双链进行切割后导致的常见后果，因此，在临床应用中，应当进行相应的检测并尽量使其风险最小化。
此前已经有大量研究发现并证实，CRISPR-Cas9 基因编辑，由于 Cas9 造成的 DNA 双链断裂，导致细胞出现染色体大片段碱基缺失、染色体碎裂、重排等严重染色体异常。这些发现提醒了我们应当加强对 CRISPR 基因编辑技术潜在风险的评估和监测。需要指出的是，碱基编辑（Base Editing），能够在不造成 DNA 双链断裂的情况下进行基因编辑，碱基编辑技术开创者刘如谦教授创立的 Beam therapeutics，以及国内的贝斯生物等，正在通过碱基编辑技术开发通用型细胞疗法，理论上能够避免 CRISPR-Cas9 基因编辑导致的染色体异常，具有更好的安全性。
